原代細(xì)胞具有貼壁特殊性,因此在消化后轉(zhuǎn)移至其他實驗器皿(如玻璃爬片、培養(yǎng)板、共聚焦培養(yǎng)皿等)時,常出現(xiàn)貼壁不牢的情況,因此我們需要對實驗器皿進(jìn)行包被處理,以增強(qiáng)細(xì)胞的貼壁性。
本期細(xì)胞學(xué)堂將為您詳述原代細(xì)胞培養(yǎng)中的包被操作步驟及注意事項,讓您的實驗順暢無阻!
為了適應(yīng)不同實驗需求,需要對培養(yǎng)器皿用不同的物質(zhì)包被后使用,包被條件常選用膠原蛋白Ⅰ(12μg/mL)、多聚賴氨酸PLL(0.1mg/mL)和明膠(0.1%)三種,依據(jù)細(xì)胞種類而定。
NO、1
膠原蛋白Ⅰ
膠原蛋白Ⅰ是最常見的膠原蛋白,能促進(jìn)細(xì)胞的貼壁和增殖,常用于上皮細(xì)胞、肝細(xì)胞、肌細(xì)胞等原代細(xì)胞的培養(yǎng);
NO.2
多聚賴氨酸PLL
多聚賴氨酸是一種合成化合物,是帶正電荷的氨基酸,通過改變培育基質(zhì)外表的電極來促進(jìn)細(xì)胞貼壁,其包被的培養(yǎng)板適用于神經(jīng)元細(xì)胞、神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞及轉(zhuǎn)染細(xì)胞系的培養(yǎng);
NO.3
明膠
明膠來自于膠原的高分子量水溶蛋白混合物,0.1%的明膠溶液常用于包被培養(yǎng)器皿以促進(jìn)細(xì)胞貼壁。明膠包被板常用于培養(yǎng)正?;蜣D(zhuǎn)染細(xì)胞如血管內(nèi)皮細(xì)胞、心肌細(xì)胞、胚胎干細(xì)胞、胰島細(xì)胞等。
1
準(zhǔn)備器皿
取出無菌培養(yǎng)器皿,如T25培養(yǎng)瓶(以下以T25瓶為例);
2
加包被試劑
取出包被試劑,在超凈工作臺內(nèi)用移液器吸取1-2mL,加入T25瓶內(nèi),輕輕晃動瓶身,確保底部全部覆蓋液體(注:使用的包被試劑為膠原蛋白Ⅰ或明膠時,1瓶可一次性加入5mL,同時包被5瓶,用5mL潤洗每瓶瓶底部后,每瓶均分1mL進(jìn)行后續(xù)包被操作);
3
放入培養(yǎng)箱
將培養(yǎng)瓶蓋好,放入37℃培養(yǎng)箱。PLL包被需要靜置30-60min以上,膠原蛋白Ⅰ包被和明膠包被需要靜置1-2h以上;
4
吸取包被試劑
取出培養(yǎng)瓶,吸出多余包被試劑(可留取下次使用,建議PLL試劑重復(fù)使用不超過2-3次,膠原蛋白Ⅰ和明膠重復(fù)使用不超過1次,多次使用會增加污染概率,減弱包被效果);
5
靜置
將培養(yǎng)瓶蓋好,放入37℃培養(yǎng)箱(也可放4℃冰箱,保持無菌即可),靜置4-24h以上,確保培養(yǎng)瓶底部干燥、無液體。包被完畢,培養(yǎng)瓶一般可存放3-7天(常溫或4℃),建議3天內(nèi)使用,存放過久,包被效果可能失效;
6
清洗
取出包被好的培養(yǎng)瓶,在超凈工作臺內(nèi),用PBS或培養(yǎng)基清洗。PLL包被的培養(yǎng)瓶需清洗2-3次,膠原蛋白Ⅰ和明膠包被培養(yǎng)瓶則清洗1-2次即可;
7
包被完成
正常接種使用培養(yǎng)瓶。
01
包被試劑的保存:無菌多聚賴氨酸PLL(0.1mg/mL)需要4℃下保存,可保存三個月;無菌膠原蛋白Ⅰ(12μg/mL)和無菌明膠(0.1%)需要在4℃下保存,1-2周內(nèi)使用,蛋白制品放置過久易失效;
02
選擇包被液用量依據(jù)不同培養(yǎng)器皿而定,一般確保培養(yǎng)器皿底部完-全覆蓋為準(zhǔn)(并且確保包被時間內(nèi)不干);
培養(yǎng)器皿 | 用量推薦(僅供參考) |
12孔板/孔 | 0.5mL |
6孔板/孔 | 0.8mL |
6cm培養(yǎng)皿/皿 | 1-1.5mL |
10cm培養(yǎng)皿/皿 | 3mL |
T25瓶/瓶 | 1-1.5mL |
T75瓶/瓶 | 3-4mL |
03
PLL有輕微毒性,膠原蛋白Ⅰ、明膠配置溶劑部分有少量毒性,所以包被后的培養(yǎng)器皿,使用前必須用PBS或培養(yǎng)基清洗1-3次;
04
細(xì)胞爬片等玻璃制品因材質(zhì)問題,本身吸附能力弱,一般必須包被;
05
包被分為包被時間和干燥時間,包被時間是包被液吸附作用時間,一般按推薦時間即可。干燥時間是包被后培養(yǎng)器皿晾干時間,是為了確保包被液晾干,達(dá)到更好的粘性吸附效果;
06
以上所有操作均以無菌試劑、耗材,無菌環(huán)境內(nèi)操作為前提。